Автор: Пользователь скрыл имя, 03 Мая 2012 в 10:09, аттестационная работа
В настоящее время противовирусные препараты нашли широкое применение в медицине. Разработаны препараты для Из множества противовирусных препаратов наибольший интерес представляют доступные в сырьевом отношении и те, производство которых не требует больших материальных затрат. К таким препаратам относятся полипренолы пихты сибирской, иммуномодулирующее, противобактериальное и противовирусное действие которых (против Сендай-инфекции, гриппа человека) уже изучено.
Введение
3
1.
Характеристика вируса ИРТ КРС
5
2.
Противовирусные препараты
6
3.
Материалы и методы
9
3.1
Вирусы и культура клеток
9
3.2
Препараты
9
3.3
Определение токсичности препаратов в культуре клеток
9
3.4
Определение ингибирующего действия препаратов
10
3.5
Определение противовирусной активности
10
3.6
Титрование вируса
10
4
Результаты
11
5
Заключение
13
Список использованных источников
14
3.1 Вирус и культура клеток.
В опытах использовали вирус ИРТ КРС (штамм ТК-А), полученный из ВИЭВ им. Я.Р. Коваленко. Инфекционную активность вируса определяли в чувствительных перевиваемых линиях культур клеток почки теленка (МDВК). В качестве ростовой среды использовали питательную среду Игла МЕМ с однократным и двойным набором аминокислот и витаминов с добавлением 5 – 10% фетальной сыворотки фирмы «BioClot» (Германия), тестированной на наличие вируса ИРТ КРС и антител к нему, 0,06% L-глутамина, 100 мкг/мл канамицина. Клетки культивировали при 37оС и 5% СО2. В качестве поддерживающей среды использовали ту же среду, но без сыворотки.
3.2 Препараты.
В работе использовали препараты: Полипренол в виде водно-эмульсионной формы, его производное Фоспренил производства ЗАО «Микро-плюс» при НИИ эпидемиологии им. Н.Ф. Гамалеи РАМН серии 1056-1058 в виде 0,4%-го раствора полипренилфосфатов в комплексном водном растворителе.
3.3 Определение токсичности препаратов в культуре клеток.
Токсичность препаратов оценивали путем добавления их разведений в среде ИГЛА МЕМ к монослою клеточной культуры МДВК, выращенной микрометодом в лунках 96-луночного планшета (Costar), до конечных концентраций 5-2000 мкг/мл (по три лунки на каждую дозу) с последующим культивированием при 37ºС в СО2-инкубаторе в течение 5 суток.
Контролем служили клетки без добавления исследуемого соединения. Жизнеспособность клеток оценивали после окрашивания 1% раствором трипанового синего, приготовленного на фосфатном буфере рН 7,2-7,3. Через 5 минут внесения краски подсчитывали количество живых (неокрашенных) и мертвых (окрашенных в голубой цвет) клеток в камере Горяева и по формуле определяли количество клеток в 1 мл, учитывая кратность разведения клеточной суспензии раствором краски. Токсичность различных доз соединений определяли по жизнеспособности клеток относительно контроля, по полученным результатам рассчитывали дозу, на 50% снижающую жизнеспособность клеток (CD50).
3.4 Определение ингибирующего эффекта препарата.
Ингибирующий эффект препарата оценивали на 4-е сутки культивирования по ЦПД вируса, исходя из степени защиты инфицированных клеток подсчетом в камере Горяева после окрашивания трипановым синим. На основании полученных результатов рассчитывали количественные характеристики ингибирования репродукции вируса ИРТ КРС: ID50 – концентрацию препарата, на 50% подавляющую продукцию вируса.
3.5 Определение противовирусной активности.
Монослой культуры клеток заражали вирусом ИРТ в дозе не менее 1 ТЦД/кл, через 1,5 часа после этого их отмывали питательной средой без сыворотки и вносили препарат в эффективной дозе или разводящую среду (контроль). Через 72 часа культивирования вируса в таких биосистемах культуральную жидкость титровали. Противовирусный эффект препаратов рассчитывали по соотношениям инфекционных активностей вирусов в опытных и контрольных образцах. В каждом опыте проводили дополнительный контроль на токсичность испытуемой дозы препаратов.
3.6 Титрование вируса.
Определение инфекционного титра вируса ИРТ проводили микрометодом в 96-луночных культуральных планшетах (Costar) с культурами клеток MDBK с использованием не менее 4 параллельных рядов. Инфекционный титр вируса выражали в ТЦД50/мл (50%-я тканевая цитопатическая доза).
Все опыты проводили в трехкратной повторности. Статистическую обработку проводили общепринятыми методами, оценивая доверительный интервал для 95%-й вероятности.
4. Результаты
Результаты исследований по определению цитотоксичности препаратов представлены в таблице 1 и 2.
Таблица 1. Определение токсичности препарата полипренол в культуре клеток МДВК
№/п | Концентрация препарата (мкг/мл) | Токсичность для культур клеток | Индекс цитотоксичности | Доля жизнеспособных клеток |
1 | 200 | + | 0,99 | 28,59 |
2 | 100 | + | 0,91 | 26,13 |
3 | 50 | + | 1,38 | 37,93 |
4 | 25 | - | 2,64 | 76,04 |
5 | 12,5 | - | 2,65 | 76,31 |
6 | 5 | - | 2,64 | 76,04 |
Таблица 2. Определение токсичности препарата фоспренил в культуре клеток МДВК
№/п | Концентрация препарата (мкг/мл) | Токсичность для культур клеток | Индекс цитотоксичности | Доля жизнеспособных клеток |
1 | 2000 | + | 0,68 | 1,97 |
2 | 1000 | + | 0,47 | 14,59 |
3 | 500 | + | 0,62 | 17,82 |
4 | 200 | - | 2,05 | 59,09 |
5 | 100 | - | 2,31 | 43,53 |
6 | 50 | - | 2,64 | 76,04 |
7 | 25 | - | 2,88 | 82,82 |
8 | 5 | - | 2,94 | 84,57 |
В результате проведенных экспериментов установлены цитотоксические дозы для полипренола и фоспренила, которые составили соответственно –50 и 500 мкг/мл (CD50). Полученные данные свидетельствуют о снижении токсичности у препарата фоспренил в 10 раз по сравнению с полипренолом.
Результаты исследований по определению противовирусного действия препаратов в отношении вируса ИРТ КРС представлены в таблице 3.
полипренол и фоспренил в культуре клеток
Наименование препарата | Доза препарата, мкг/мл | Титр вируса ИРТ КРС (М±m), lg.ТЦД50/мл | |
Опыт | Контроль | ||
Полипренол | 25 | 2,080,12 | 5,580,12 |
Фоспренил | 200 | 1,670,12 |
Примечание: различия между контролем и соответствующими показателями в указанных случаях статистически достоверны с вероятностью 95%.
Полученные результаты свидетельствуют о том, что испытанные препараты в значительной степени подавляли репродукцию вируса ИРТ КРС в чувствительной культуре клеток.
Полипренол подавлял репродукцию вируса на 3,5 lg.ТЦД50/мл, а фоспренил – на 3,91 lg.ТЦД50/мл по сравнению с контролем.
При определении 50% ингибирующих концентраций изучаемых препаратов в культуре клеток MDВK они составили для полипренола - 25 мкг/мл, фоспренила - 200 мкг/мл. Более выраженная токсичность полипренола может быть связана с методом его получения и по всей вероятности может варьировать в каждой новой серии препарата.
Сравнительное изучение противовирусной активности фоспренила и полипренола в опытах in vitro на модели вируса ИРТ КРС показало, что он обладает более выраженной противовирусной активностью. Кроме того, у него установлено вирулицидное действие в отношении вируса ИРТ КРС. Препарат вызвал статистически достоверное снижение инфекционной активности вируса на 2,17 lg ТЦД50/мл.
5. Заключение
В опытах in vitro на модели вируса ИРТ КРС проведено сравнительное изучение противовирусной активности препаратов полипренол и фоспренил. В результате проведенных исследований установлено, что фоспренил обладает вирулицидной и выраженной противовирусной активностью в отношении вируса ИРТ КРС.
Список использованных источников
1. Бирман Б.Я., Наттиева Т.Г., Захарик Н.В. Новые антивирусные препараты в профилактике и лечении смешанных респираторных заболеваний телят и птиц/ Актуальные проблемы ветеринарной и зоотехнической науки в интенсификации животноводства. - МВА, 1990.-с.127-128.
2. Вирусные заболевания крупного рогатого скота в Сибири и на Урале (Особенности эпизоотологии, клинического проявления, диагностика, меры профилактики и борьбы): Методические рекомендации / РАСХН, Сиб. отд-ние, ИЭВСиДВ. - Новосибирск, 2001.-25 с.
3. Жданов В.М., Баринский И.Ф., Ершов Ф.И., Нестерчук С.Л. Иммуномодуляторы и химиопрепараты в терапии синдрома приобретенного иммунодефицита // Вопросы вирусологии, 1987. - №1. С. 6-11.
4. Ожерелков С.В., Белоусова Р.В., Данилов Л.Л. и др. Препарат фоспренил подавляет размножение вирусов диареи и инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в чувствительных культурах клеток // Вопросы вирусологии, 2001. - №5. С. 43-45.