Автор: Пользователь скрыл имя, 20 Декабря 2011 в 07:18, диссертация
Мета і задачі дослідження. Метою роботи було вивчення складу жирних кислот, мінорних компонентів та проведення компонент-специфічного ізотопного аналізу ПЛ деяких видів хвойних та водних рослин.
Для досягнення мети були поставлені задачі :
Провести хромато-мас-спектрометричний аналіз сумарної фракції жирних кислот хвойних та водних рослин.
Визначити зміни молекулярно-динамічних характеристик та складу ПЛ хвойних рослин в умовах адаптації до шкідливих факторів середовища.
Визначити величину дискримінації важкого ізотопу 13С у компонентах ПЛ хвойних та водних рослин.
На основі отриманих даних розглянути можливі шляхи біосинтезу окремих компонентів.
Газову хроматографію жирних кислот проводили за Richnow [2003] на хроматографі НР 6890. Розподіл жирних кислот проводили у вигляді метилових естерів. Газова хроматографія проводилась безперервним способом з терміном очистки 0,16 хв. Ін’єкція проводилась при температурі 180 єС. Проба вносилась в кількості 4 μl.
Газову хроматографію вуглеводнів проводили на тому ж хроматографі й при тих самих умовах розподілення, що для полярних компонентів, але з іншим температурним режимом.
Процес та ідентифікація компонентів при газовій хроматографії здійснювався за допомогою мас-спектрометричної приставки НР 5973 (Hewlett Packard, USA) та програми Enhansed Chem. Stations G 1701 AA Var 03.00.
Визначення
співвідношення стабільних
ізотопів Карбону в компонентах ПЛ проводили
за Schleffus [2003] на хроматографі GC-С-irmMS-gas
chromatography / combustion / isotope-ratio-monitoring mass spectrometry
– газова хроматографія з наступними
розкладанням та мас – спектрометричним
визначенням співвідношення ізотопів.
(FINNIGAN MAT–252, Bremen, Germany). Співвідношення
ізотопів Карбону у індивідуальних компонентах
розраховували шляхом порівняння із стандартними
СО2 з певним вмістом ізотопів
12С, 13С та 14С з відповідними
масами 44, 45 і 46 та наступним визначенням
величини іонного потоку.
РЕЗУЛЬТАТИ ДОСЛІДЖЕНЬ ТА ЇХ ОБГОВОРЕННЯ
Розробка сучасних методичних підходів до вивчення біохімічних особливостей поверхневих ліпідів рослин. У цьому розділі автором обговорюється застосування методів хроматографічного розподілення і аналізу мінорних компонентів та жирних кислот ПЛ , а також застосування таких методів хромато-мас-спектрометрія, компонент-специфічний ізотопний аналіз, ДТА, ІЧ-спектроскопія для вирішення поставлених задач.
Жирні кислоти поверхневих ліпідів хвойних. Застосування сучасних методичних підходів дало можливість ідентифікувати у фракції жирних кислот ряд нових сполук, які практично не згадуються в оглядових роботах, присвячених біохімії ПЛ. Окрім звичайних кислот у фракції жирних кислот нами знайдені сполуки, наявність яких у ПЛ не обговорювалася раніше.
Розгалужені кислоти мали таку загальну формулу (рис. 1):
n = 11, 13 n = 12, 10
Знайдено дикарбонові кислоти загальної формули:
n = 7, 11 n = 12
та аліциклічна кислота
Рис .1 Незвичайні жирні кислоти поверхневих ліпідів.
Синтез розгалужених кислот відбувається внаслідок залучення до біосинтезу включення розгалужених амінокислот [Mukherji, 2003]. Циклопропановий фрагмент може синтезуватися внаслідок приєднання групи -СН3 до подвійного зв’язку (донор SAM) [Bao, 2003]. Дикарбонові кислоти синтезуються при окисненні кінцевої групи -СН3 відповідної монокарбонової кислоти [Kulattukudy, 1981]. Оскільки вищезгадані сполуки знайдено вперше ПЛ тканинах рослин, це підтверджує існування цих біосинтетичних систем у епідермальних тканинах рослин.
Незвичайні
жирні кислот за виключенням аліциклічної
кислоти знаходяться у
Мінорні компоненти поверхневих ліпідів хвойних. Застосуваня методичних підходів, описаних вище, дозволило виділити та охарактеризувати ряд сполук терпеноїдної природи у ПЛ хвойних, які знаходились у невеликих кількостях і які раніше майже не обговорювались при вивченні ПЛ рослин.
Серед них – похідні абієтанової (1 - 5) та пімаранової (6 - 8) кислот (рис. 2)
Рис. 2 Дитерпенові похідні поверхневих ліпідів
Дитерпени були знайдені лише у ПЛ Picea abies і Pinus pallasiana. Здебільшого у сучасних хвойних знайдено похідні абієтанів, які містять ненасичене шестичленне кільце. За своєю ненасиченістю 4 ,5 сполуки подібні до розповсюджених, але містять замісники (окиснені метилові групи, метокси групи), що не спостерігалося раніше. Також практично відсутні згадки про терпеноїди типу 1,2,3 у яких третє кільце частково відновлене. Отже, усі похідні абієтанової кислоти знайдені нами вперше. Похідні пімарової кислоти є гомологами абієтанів, які відрізняються на одне етиленове угрупування. Такі сполуки також не знайдено в тканинах хвойних [Otto, 2003], отже, вони характерні лише для ПЛ листя. Вміст абієтанової кислоти досягав 23,45 % у ПЛ Picea abies першого року. Показано переважання дитерпенів на першому році онтогенезу. Для дитерпенів, на відміну від тритерпенів, характерний немевалонатний шлях біосинтезу, всі реакції якого проходять в стромі пластид [Martin, 2002].
Існування терпеноїдів з різноманітними функціональними групами в захисному ліпідному шарі може бути пов’язане з необхідністю формування групи речовин, що забезпечують гетерогенну суміш, здатну підтримувати певний “молекулярно-динамічний стан” поверхневих тканин. Такий стан потребує наявності, з одного боку, високомолекулярних гідрофобних речовин, які роблять вагомий внесок в “аморфну” частину ПЛ, з іншого боку - полярних речовин, або частин молекул, що забезпечують здатність до асоціації та формування кристалічної фази.
Показано наявність в ПЛ сквалену та п-кумарової кислоти. Попередник три терпенів сквален був характерний для ПЛ Picea pungens, найбільше його (0,71 %) спостерігалося на першому році онтогенезу. п-Кумарова кислота була характерна для ПЛ лише представника роду Pinus (0,4 %).
Біохімічні характеристики поверхневих ліпідів хвойних з частковим пошкодженням крони. Вивчалися загальні характеристики ПЛ, такі як ІЧ-спектри та ДТА сумарних фракцій ПЛ досліджуваних рослин. Розглянемо їх зміни на прикладі ПЛ Pinus pallasiana (табл. 1).
| Таблиця.1
Відносна інтенсивність двох смуг карбонільного поглинання сумарних поверхневих ліпідів контрольних рослин (к) та рослин з частковим пошкодженням крони (д) | |
| Досліджувана рослина | Співвідношення
інтенсивностей смуг
(1640-1650 : 1725-1740) (ν см-1) |
| Pinus pallasiana 1рік/к | 1:4,0 |
| Pinus pallasiana 2рік/к | 1:4,10 |
| Pinus pallasiana 1рік/д | 1:1,24 |
| Pinus pallasiana 2рік/д | 1:1,50 |
Так, ІЧ-спектри контрольних та дослідних рослин відрізнялись областю карбонільного поглинання. Інтенсивність двох смуг поглинання, які відносяться до груп, змінювалися під впливом токсикантів. При цьому, як онтогенетичні, так і екзогенні фактори мали однакове спрямування: збільшувалася інтенсивність поглинання більш короткохвильової смуги (1725 - 1740 см-1) у порівнянні з більш довгохвильовою смугою (1640 - 1650 см-1). Обидві смуги відносяться до валентного коливання карбонільної групи. Оскільки в ПЛ хвойних оксо-сполуки (альдегіди та кетони) відсутні, аналогічні зміни спектральних характеристик свідчили про зміну жирнокислотного складу ПЛ у процесі онтогенезу [Берзеніна, 2000], ми припустили, що в умовах токсичної дії екзогенних речовин відбуваються перебудови ПЛ (синтез de novo одних компонентів, розклад інших, або разом), які включають біосинтез жирних кислот. Необхідно відмітити, що ІЧ-спектральні характеристики застосовані нами вперше для оцінки екзогенного впливу на склад ПЛ.
Таблиця 2
Параметри ендотермічних переходів поверхневих ліпідів листя хвойних різного віку контрольних рослин (к) та рослин з частковим пошкодженням крони (д)
| Вид рослини, вік |
| |||||||||||
| Pinus pallasiana 1рік/к | 20-40 | - | 45-55 | 52 | ||||||||
| Pinus pallasiana 1рік/д | - | - | 38-79 | 74 | ||||||||
| Pinus pallasiana 2рік/к | 22-43 | - | 45-70 | 56 | ||||||||
| Pinus pallasiana 2рік/д | - | - | 46-90 | 76 | ||||||||
Перший ендотермічний ефект було знайдено тільки для рослин, які вирощувалися у контрольних умовах. Цей низькотемпературний ефект без мінімуму відносять до переходу аморфної фази ПЛ в кристалічну [Reynhardt, 1994]. Отже, відсутність такого переходу у рослин з частковим пошкодженням крони може бути пояснена зниженням інтенсивності біосинтезу тих компонентів ПЛ, які утворюють аморфну фазу (естери, вуглеводні і т. і.) внаслідок впливу токсикантів.
Другий
ендотермічний ефект
| Таблиця
3
Вміст низькомолекулярнихх та високомолекулярних жирнихх кислот поверхневих ліпідів Pinus pallasianaх контрольних рослин (к)) та рослин з частковим пошкодженням крони (д) (у % від суми) n = 4, P<0,05) | ||||||||||||
| Клас жирних кислот |
| |||||||||||
| Високомолекулярні | 90,11±0,24 | 77,17±0,17 | 73,14±0,23 | 88,21±0,28 | ||||||||
| Низькомолекулярні | 4,28±0,07 | 16,83±0,15 | 20,12±0,29 | 8,45±0,07 | ||||||||
У ПЛ контрольних рослин спостерігається збільшення на 12 % вміст високомолекулярних кислот з віком. При пошкодженні крони вміст довголанцюгових жирних кислот на 12 % зменшується. Ці дані співпадають з даними ДТА про зростання гетерогенності при дії токсикантів. Отже, вплив токсикантів викликає гальмування процесу елонгації жирних кислот.
В той же час вміст С18 - жирних кислот (С18:0, С18:1, С18:2) зростає здебільшого у всіх досліджених зразках під дією токсикантів. Для ПЛ Pinus pallasiana зростання характерне для першого року, де під впливом вміст С18 - жирних кислот збільшується на 1,13 %, в той же час вміст ненасичених кислот під впливом токсикантів зростає на 3,25 %.
Вміст аліциклічної кислоти зростає з 0,01 % для рослин контрольної групи до 45 % під дією токсикантів на першому році і, відповідно, зменшується з 18,95 % до 16,55 % на другому році. А вміст дитерпенів зростає з 10,77 % для рослин контрольної групи до 17,45 % під дією токсикантів на першому році і, відповідно, з 1,6 % до 17,8 % на другому році.
Жирні кислоти та мінорні компоненти поверхневих ліпідів водних рослин. У складі ПЛ водних рослин (табл. 3) нами був встановлений підвищений вміст ненасичених жирних кислот, жирних кислот з непарною кількістю атомів Карбону та вмісту кислот з довжиною ланцюга С16, С18 (табл. 4).
| Таблиця 4
Вміст жирних кислот досліджуваних водних рослин(у % до суми) n = 4, P<0,05 | ||
| Жирна кислота | Typha latifolia L. | Juncus effusus L. |
| C 12:0 | 1,93±0,12 | 1,51±0,09 |
| C 14:0 | 9,05±0,21 | 7,81±0,05 |
| C 15:0 | 4,03±0,08 | 6,07±0,07 |
| C 16:1 | 12,02±0,09 | 18,13±0,12 |
| C 16:0 | 27,21±0,16 | 31,43±0,25 |
| C 17:0 | 1,14±0,08 | 1,63±0,05 |
| C 18:2 | 1,83±0,06 | 2,13±0,03 |
| C 18:1 | 11,66±0,11 | 14,61±0,32 |
| C 18:0 | 11,79±0,54 | 14,74±0,21 |
| C 20:0 | 2,35±0,21 | 3,42±0,06 |
| C 24:0 | 6,69±0,07 | 5,31±0,06 |
| C 28:0 | 7,36±0,12 | 6,33±0,31 |
| С 30:0 | 8,02±0,02 | 12,51±0,07 |